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| Test ELISA typique
sur une plaque de 96-puits utilisant horse radish peroxidase
comme enzyme et OPD comme substrat. Dans ce cas particulier,
chaque échantillon était
testé en triple.
[Photographie: Marcel Hommel] |
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4.7.2 ELISA
La méthode immuno-enzymatique (ELISA)
utilise un antigène
soluble, qui est
attaché aux 96 puits d'une plaque de microtitrage. Ceci permet
de traiter
un grand nombre d'échantillons à la fois et donne des résultats
quantitatifs,
lorsque le test est lu à l'aide d'un spectrophotomètre.
Dans les situations de terrain, des lecteurs ELISA portables,
fonctionnant sur piles, peuvent être utilisés.
Pour la préparation des extraits solubles
de parasites utilisés comme antigène dans l'ELISA, une culture
in vitro riche en schizontes (à une parasitémie de 10%
ou plus) est
centrifugation, les globules rouges sont lavés plusieurs fois,
puis lysés dans un tampon hypotonique froid pour libérer l'hémoglobine,
laissant les parasites intacts. Les antigènes sont ensuite
solubilisés par sonication des parasites ou par congélation-décongélation
répétée, suiv d'une centrifugation à haute vitesse pour éliminer
les débris non solubles. Le surnageant est utilisé
comme stock d'antigène soluble,
et conservé en aliquots à -70ßC. La concentration optimale d'antigène
sur la plaque ELISA est détermineé par titration croisée (chequer-board
titration) envers des sérums positifs et négatifs connus.
Toutes les 96 cupules d'une plaque de polystyrène
sont tapissés d'antigène par incubation à 4ßC d'une dilution
optimale de l'antigène soluble dans un tampon carbonate à pH
9.6 (100µl par cupule).
Après lavage,
les plaques peuvent être utilisées immédiatement ou séchées et
conservées à 4ßC pendant plusieurs années. Les sérums à tester,
utilisés à une dilution de 1:100
ou
1:200
dans du tampon phosphate contenant
0.05%
de Tween 20, sont transférrés dans chacune des cupules de la
plaque et incubés pendant 2 heures à température ambiante, puis
lavés.
Une dilution du conjugué enzyme-anti-immunoglobuline
humaine, diluée suivant les instructions du fabriquant, est ajoutée
à chaque cupule, incubée pendant 2 heures , suivi d'un lavage comme
précédemment. Finalement, une solution de substrat fraichement
préparée est ajoutée à chaque cupule et incubée jusqu'au
changement de couleur du chromogène (la réaction est standardisée
en fonction de l'intensité de couleur attendue pour le sérum positif
standard utilisé comme contrôle).
L'intensité de la couluer dans chacune des cupules peut être
évaluée visuellement lorsque le test est utilisé pour un test approximatif
mesurant une réaction positive/négative (ou dans des situations
de terrain), Normalement, l'absorbanceest mesurée à l'aide d'un
spectrophotomètre utilisant la longueur d'onde appropriée à la
couleur du chromogène.
Les combinaisons conjugué/substrat les plus
habituelles sont:
i) phosphatase
alcaline-conjuguée à l'anti- immunoglobuline
humain avec la para-nitrophenyl phosphate comme substrat
de l'enzyme
ii) peroxidase
du raifort-conjuguée à l'anti- immunoglobuline
humain avec l'ortho-phénylène diamine (OPD) comme substrat.
Les substrats
sont disponibles dans le commerce sous des formes facile à utiliser.
Outre les extraits bruts d'antigènes parasitaires,
l'ELISA peut utiliser une gamme d'antigènes définis,
synthétiques ou recombinant (par exemple les antigènes MSP-1,
RESA ou CSP-1). De telles études séro-épidémiologiques sont utiles
pour élucider le rôle d'un
antigène-cible donné dans l'immunité et la protection contre le
paludisme. |